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通络糖泰对高糖培养的SD大鼠施旺细胞增殖与分化的影响

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通络糖泰对高糖培养的SD大鼠施旺细胞增殖与分化的影响
论文目录
 
摘要第1-5页
Abstract第5-11页
英文缩略词第11-12页
前言第12-14页
材料第14-18页
一 实验动物第14页
二 饲养环境及饲料第14-15页
三 主要仪器设备及耗材第15-16页
四 实验用药及主要试剂第16-18页
(一)实验用药第16页
(二)主要试剂第16-17页
(三)主要溶液及试剂配制第17-18页
实验方法第18-26页
一 空白血清和通络糖泰含药血清制备第18-19页
二 新生SD大鼠施万细胞体外原代培养、纯化、传代及鉴定第19-21页
(一)施万细胞原代培养第19页
(二)细胞纯化第19-20页
(三)细胞的传代第20页
(四)细胞计数第20页
(五)细胞冻存及复苏第20-21页
(六)细胞免疫荧光染色第21页
三 CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCs增殖的影响第21-23页
(一)实验分组及条件培养基的配制第21-22页
(二)CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCs吸光密度值(Optical density,OD)的影响第22-23页
四 实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCsP0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响第23-26页
(一)实验分组及条件培养基的配制第23页
(二)实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCsP0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响第23-26页
学方法第26页
结果第26-37页
一 免疫荧光鉴定结果第26-27页
二 CCK-8法检测通络糖泰对SD大鼠SCsOD值的影响第27-30页
三 实时荧光定量PCR法检测通络糖泰对SD大鼠SCs髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响第30-37页
(一)P0结果第32-34页
(二)MAG结果第34-35页
(三)Krox-20结果第35-37页
讨论第37-47页
一 体外原代培养、纯化及鉴定实验方案的选择第37-38页
二 CCK-8法及PCR法分别检测通络糖泰对SD大鼠SCc增殖及髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的实验方案的选择第38-39页
三 通络糖泰对SD大鼠SCs的增殖及髓鞘调控基因P0、MAG、Krox-20 mRNA表达的影响第39-41页
四 通络糖泰对SD大鼠SCs增殖及成髓化影响的可能机制探讨第41-47页
(一)胰岛素样生长因子-1(Insulin-like growth factor-1,IGF-1)简介第41页
(二)IGF-1与糖尿病周围神经病变的关系第41-42页
(三)IGF-1与施旺细胞的增殖及髓鞘的形成的关系第42页
(四)糖尿病周围神经病的中医病机探讨第42-44页
(五)通络糖泰组成与药理药效分析第44-47页
结论第47-48页
问题与展望第48-49页
参考文献第49-56页
综述一 施旺细胞与髓鞘的关系第56-61页
参考文献第59-61页
综述二 高血糖对DPN发病机制的影响第61-65页
参考文献第64-65页
致谢第65-66页
附件 1第66-67页

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