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白藜芦醇和褪黑素对奶牛性控冻精精子质量和体外受精能力的影响

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白藜芦醇和褪黑素对奶牛性控冻精精子质量和体外受精能力的影响
论文目录
 
摘要第1-7页
abstract第7-12页
英文缩略表第12-13页
第一章 文献综述第13-19页
  1.1 性控冻精的生产研究及澳门美高梅真人娱乐官网第13页
  1.2 性控冻精的制备方法第13页
  1.3 性控冻精存在的问题第13-14页
  1.4 性控冻精氧化损伤研究进展第14-16页
    1.4.1 性控冻精ROS的种类及产生方式第14-15页
    1.4.2 性控冻精生产、冷冻及解冻过程中受到的氧化损伤第15页
    1.4.3 ROS对精子氧化损伤作用机制第15-16页
  1.5 抗氧化剂的澳门美高梅真人娱乐官网第16-17页
    1.5.1 白藜芦醇在精液中的作用机制第16-17页
    1.5.2 褪黑素在精液中的作用机制第17页
  1.6 研究展望第17页
  1.7 本研究的立题依据及研究内容第17-19页
    1.7.1 立题依据第17-18页
    1.7.2 研究内容第18-19页
第二章 不同浓度白藜芦醇处理对奶牛性控冻精质量及体外受精能力的影响第19-35页
  2.1 前言第19-20页
  2.2 材料第20-22页
    2.2.1 试验材料第20页
    2.2.2 主要实验设备第20页
    2.2.3 试验验试剂及染料第20-21页
    2.2.4 试验相关溶液的配制第21-22页
  2.3 试验方法第22-24页
    2.3.1 卵母细胞采集和体外成熟第22页
    2.3.2 性控冻精的准备第22页
    2.3.3 性控冻精中ROS含量测定第22页
    2.3.4 性控冻精中PS外翻测定第22-23页
    2.3.5 性控冻精中Δψm水平检测第23页
    2.3.6 性控冻精中ATP含量检测第23页
    2.3.7 性控冻精中MDA含量检测第23页
    2.3.8 性控冻精中顶体完整性检测第23页
    2.3.9 性控冻精受精能力检测第23-24页
    2.3.10 性控胚胎BAX和BCL2L1mRNAs表达量分析第24页
    2.3.11 数据与分析第24页
  2.4 实验结果第24-32页
    2.4.1 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精ROS水平的影响第24-25页
    2.4.2 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精PS外翻的影响第25-26页
    2.4.3 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精Δψm的影响第26-27页
    2.4.4 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精ATP含量的影响第27-28页
    2.4.5 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精MDA含量的影响第28-29页
    2.4.6 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精顶体完整性的影响第29-30页
    2.4.7 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精IVF能力的影响第30-31页
    2.4.8 不同浓度Res处理对奶牛性控囊胚中BAX和BCL2L1mRNAs表达量的影响第31-32页
  2.5 讨论第32-35页
    2.5.1 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精ROS水平的影响第32页
    2.5.2 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精PS外翻的影响第32页
    2.5.3 不同浓度Res处理对奶牛性控冻精Δψm的影响第32-33页
    2.5.4 不同浓度Res对奶牛性控冻精ATP含量的影响第33页
    2.5.5 不同浓度Res对奶牛性控冻精MDA含量的影响第33页
    2.5.6 不同浓度Res对奶牛性控冻精顶体完整性的影响第33页
    2.5.7 不同浓度Res对奶牛性控冻精IVF能力的影响第33-34页
    2.5.8 不同浓度Res处理对奶牛性控囊胚中BAX和BCL2L1mRNAs表达量的影响第34-35页
第三章 不同浓度褪黑素处理对奶牛性控冻精质量和受精能力的影响第35-55页
  3.1 前言第35页
  3.2 材料第35-37页
    3.2.1 试验材料第35页
    3.2.2 主要试验仪器第35-36页
    3.2.3 试验试剂及染料第36页
    3.2.4 试验相关溶液的配制第36-37页
  3.3 试验方法第37-41页
    3.3.1 牛卵母细胞采集和体外成熟第37-38页
    3.3.2 性控冻精的处理第38页
    3.3.3 性控冻精中ROS水平的测定第38页
    3.3.4 性控冻精中内源性抗氧化酶活力水平的测定第38-39页
    3.3.5 性控冻精中PS外翻的测定第39页
    3.3.6 性控冻精中Δψm水平的测定第39页
    3.3.7 性控冻精中MDA水平的测定第39页
    3.3.8 性控冻精顶体完整性的测定第39页
    3.3.9 性控冻精中精子获能状态的测定第39-40页
    3.3.10 性控冻精[Ca~(2+)]i水平的测定第40页
    3.3.11 性控冻精中cAMP含量的测定第40页
    3.3.12 性控冻精体外受精能力的测定第40页
    3.3.13 数据与分析第40-41页
  3.4 实验结果与分析第41-52页
    3.4.1 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精ROS水平的影响第41页
    3.4.2 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精内源性抗氧化酶活力水平的影响第41-42页
    3.4.3 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精PS外翻的影响第42-44页
    3.4.4 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精线粒体Δψm的影响第44-45页
    3.4.5 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精MDA含量的影响第45-46页
    3.4.6 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精顶体完整性的影响第46-47页
    3.4.7 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精精子获能状态的影响第47-49页
    3.4.8 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精胞内cAMP含量的影响第49页
    3.4.9 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精[Ca~(2+)]i含量的影响第49-51页
    3.4.10 不同浓度MT处理对奶牛性控冻精IVF效率的影响第51-52页
  3.5 讨论第52-55页
    3.5.1 不同浓度MT对奶牛性控冻精ROS含量的影响第52页
    3.5.2 不同浓度MT对奶牛性控冻精内源性抗氧化酶活力水平的影响第52页
    3.5.3 不同浓度MT对奶牛性控冻精凋亡事件PS外翻和Δψm的影响。第52-53页
    3.5.4 不同浓度MT对奶牛性控冻精氧化代谢产物MDA的影响。第53页
    3.5.5 不同浓度MT对奶牛性控冻精顶体完整性的影响第53页
    3.5.6 不同浓度MT对奶牛性控冻精获能相关事件的影响第53-54页
    3.5.7 不同浓度MT对奶牛性控冻精IVF的影响研究第54-55页
第四章 褪黑素受体抑制剂对奶牛性控冻精获能的影响第55-62页
  4.1 前言第55页
  4.2 材料第55-56页
    4.2.1 试验材料第55页
    4.2.2 主要试验仪器第55-56页
    4.2.3 试验试剂及染料第56页
    4.2.4 试验相关溶液的配制第56页
  4.3 试验方法第56-57页
    4.3.1 利用Westernblot检测奶牛性控精子中MT1和MT2受体第56页
    4.3.2 通过添加MT1和MT2受体抑制剂检测MT受体的功能第56页
    4.3.3 数据与分析第56-57页
  4.4 实验结果第57-60页
    4.4.1 奶牛性控冻精精子MT1和MT2受体检测第57页
    4.4.2 MT受体抑制剂处理对奶牛性控冻精获能状态的影响第57-59页
    4.4.3 MT受体抑制剂处理对奶牛性控冻精[Ca~(2+)]i水平的影响第59页
    4.4.4 MT受体抑制剂处理对奶牛性控冻精胞内cAMP水平的影响第59-60页
  4.6 讨论第60-62页
第五章 全文结论第62-63页
参考文献第63-72页
致谢第72-73页
作者简介第73页

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