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不同萌发条件及成熟度对花生芽营养成分及白藜芦醇含量的研究

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不同萌发条件及成熟度对花生芽营养成分及白藜芦醇含量的研究
论文目录
 
摘要第1-6页
abstract第6-17页
引言第17-23页
  0.1 芽类食品简介第17页
  0.2 发芽花生第17-18页
    0.2.1 发芽花生的优势第17页
    0.2.2 花生及发芽过程中主要营养物质的变化第17-18页
  0.3 白藜芦醇第18-21页
    0.3.1 白藜芦醇简介第18页
    0.3.2 白藜芦醇的合成第18-20页
    0.3.3 白藜芦醇的功能特性第20-21页
    0.3.4 花生中的白藜芦醇第21页
    0.3.5 白藜芦醇的测定方法——高效液相色谱法(HPLC)第21页
  0.4 研究目的与意义第21-23页
第1章 花生中富集白藜芦醇最佳的萌发条件研究第23-35页
  1.1 实验目的第23页
  1.2 实验方案第23页
  1.3 实验试剂和仪器第23-25页
    1.3.1 实验花生第23-24页
    1.3.2 实验试剂第24页
    1.3.3 实验仪器第24-25页
  1.4 实验方法第25-26页
    1.4.1 发芽工艺第25页
    1.4.2 发芽工艺参数优化第25页
    1.4.3 响应面实验各水平和编码第25-26页
    1.4.4 白藜芦醇含量测定第26页
    1.4.5 数据处理分析第26页
  1.5 结果分析第26-33页
    1.5.1 发芽工艺结果单因素分析第26-30页
    1.5.2 响应面实验结果设计与分析第30-33页
      1.5.2.1 响应面实验结果第30-31页
      1.5.2.2 交互作用分析第31-33页
      1.5.2.3 验证性实验第33页
  1.6 本章小结第33-35页
第2章 不同成熟度花生中白藜芦醇含量的测定第35-44页
  2.1 实验目的第35页
  2.2 实验方案第35页
  2.3 实验试剂和仪器第35-36页
    2.3.1 实验花生第35-36页
    2.3.2 实验试剂第36页
    2.3.3 实验仪器第36页
  2.4 实验方法第36-39页
    2.4.1 花生成熟度分级方法第36-38页
    2.4.2 实验流程第38页
    2.4.3 数据分析第38-39页
  2.5 结果分析第39-41页
    2.5.1 不同成熟度花生表观和种子差异第39-41页
  2.6 不同成熟度花生中白藜芦醇含量第41-43页
  2.7 本章小结第43-44页
第3章 阜花17号与多种不同油酸品种萌发试验第44-52页
  3.1 实验目的第44页
  3.2 实验方案第44页
  3.3 实验试剂和仪器第44-45页
    3.3.1 实验花生第44-45页
    3.3.2 实验试剂第45页
    3.3.3 实验仪器第45页
  3.4 实验方法第45-46页
    3.4.1 气相色谱法测定花生中的脂肪酸第45-46页
    3.4.2 萌发条件第46页
    3.4.3 高效液相色谱法测定白藜芦醇含量第46页
  3.5 结果分析第46-50页
    3.5.1 气相色谱测定19种花生脂肪酸含量。第46-49页
    3.5.2 高效液相色谱测定19种花生白藜芦醇含量第49-50页
  3.6 本章小结第50-52页
第4章 花生萌发过程中营养成分的变化第52-68页
  4.1 实验目的第52页
  4.2 实验方案第52页
  4.3 实验主要仪器和试剂第52-54页
    4.3.1 实验试剂第52-53页
    4.3.2 实验仪器第53-54页
  4.4 实验方法第54-56页
    4.4.1 花生萌发过程中芽长的测定第54页
    4.4.2 花生萌发过程中含水率的测定第54页
    4.4.3 花生萌发过程中粗灰分的测定第54-55页
    4.4.4 花生萌发过程中粗脂肪的测定第55页
    4.4.5 花生萌发过程中总蛋白的测定第55页
    4.4.6 花生萌发过程中总糖的测定第55页
    4.4.7 花生萌发过程中氨基酸的测定第55-56页
    4.4.8 花生萌发过程中白藜芦醇的测定第56页
    4.4.9 数据分析第56页
  4.5 实验结果第56-66页
    4.5.1 花生萌发过程中芽长的变化第57-58页
    4.5.2 花生萌发过程中含水率的变化第58页
    4.5.3 花生萌发过程中灰分的变化第58-59页
    4.5.4 花生萌发过程中粗脂肪的变化第59-60页
    4.5.5 花生萌发过程中蛋白质的变化第60-61页
    4.5.6 花生萌发过程中游离氨基酸的变化第61页
    4.5.7 花生萌发过程中总糖的变化第61-62页
    4.5.8 花生萌发过程中18种氨基酸的变化第62-65页
    4.5.9 花生萌发过程中白藜芦醇的变化第65-66页
  4.6 本章小结第66-68页
第5章 白藜芦醇合成关键限速酶芪合酶的研究第68-80页
  5.1 实验目的第68页
  5.2 实验方案第68页
  5.3 实验试剂和仪器第68-69页
    5.3.1 实验花生第68页
    5.3.2 实验试剂第68-69页
    5.3.3 实验仪器第69页
  5.4 实验方法及流程第69-73页
    5.4.1 花生的萌发第70页
    5.4.2 样品前处理第70页
    5.4.3 引物的合成第70页
    5.4.4 RNA的提取及纯化第70-71页
    5.4.5 RNA浓度检测第71页
    5.4.6 cDNA第一链合成(反转录)第71-72页
    5.4.7 实时荧光定量分析第72-73页
    5.4.8 数据分析第73页
  5.5 结果分析第73-78页
    5.5.1 阜花17号内参基因及目的基因的扩增曲线及溶解曲线第73-74页
    5.5.2 L61号内参基因及目的基因的扩增曲线及溶解曲线第74-75页
    5.5.3 FH17号荧光相对定量结果分析第75-77页
    5.5.4 L61号荧光相对定量数据第77-78页
  5.6 本章小结第78-80页
第6章 结论第80-82页
  6.1 主要结论第80-81页
  6.2 创新点第81页
  6.3 展望第81-82页
致谢第82-83页
参考文献第83-86页

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