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HPLC-MS技术对贝类酸性多糖的检测与分析

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HPLC-MS技术对贝类酸性多糖的检测与分析
论文目录
 
摘要第1-5页
Abstract第5-10页
第一章 绪论第10-19页
  1.1 贝类概述第10页
  1.2 贝类酸性多糖第10-13页
    1.2.1 糖胺聚糖第10-12页
      1.2.1.1 透明质酸第11页
      1.2.1.2 硫酸角质素第11页
      1.2.1.3 肝素、硫酸乙酰肝素第11页
      1.2.1.4 硫酸软骨素、硫酸皮肤素第11-12页
      1.2.1.5 其他糖胺聚糖第12页
    1.2.2 非糖胺聚糖第12-13页
  1.3 酸性多糖的降解方法第13-15页
    1.3.1 物理降解法第13页
      1.3.1.1 微波辐射降解第13页
      1.3.1.2 超声波法第13页
      1.3.1.3 高压均质降解法第13页
    1.3.2 生物降解法第13-14页
    1.3.3 化学降解法第14-15页
      1.3.3.1 过氧化氢降解第14页
      1.3.3.2 亚硝酸钠降解第14页
      1.3.3.3 电化学降解第14-15页
      1.3.3.4 酸降解第15页
  1.4 酸性多糖残基的分析方法第15-17页
    1.4.1 薄层色谱法第15页
    1.4.2 气相色谱法第15-16页
    1.4.3 高效液相色谱法第16页
    1.4.4 离子色谱法第16页
    1.4.5 LC/MS联用技术第16-17页
  1.5 糖数据库第17-18页
  1.6 研究内容及选题意义第18-19页
    1.6.1 研究内容第18页
    1.6.2 选题意义第18-19页
第二章 材料与方法第19-27页
  2.1 材料第19-22页
    2.1.1 实验原料第19-20页
    2.1.2 主要实验试剂第20-21页
    2.1.3 主要实验仪器第21-22页
  2.2 实验方法第22-26页
    2.2.1 原料预处理第22页
    2.2.2 酶解时间的确立第22页
    2.2.3 醇沉条件的确定第22-23页
    2.2.4 原料中粗多糖的提取第23页
    2.2.5 样品硫酸多糖含量的测定第23页
      2.2.5.1 1,9-二甲基亚甲蓝(DMB)染色液的配置第23页
      2.2.5.2 制作标准曲线第23页
      2.2.5.3 样品硫酸多糖含量的测定第23页
    2.2.6 定性分析8种贝类中的酸性多糖第23-25页
      2.2.6.1 酸水解第23-24页
      2.2.6.2 1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)柱前衍生化第24页
      2.2.6.3 HPLC-MS分析第24-25页
    2.2.7 定量分析21种贝类中的酸性多糖第25-26页
      2.2.7.1 酸水解第25页
      2.2.7.2 PMP柱前衍生化第25页
      2.2.7.3 HPLC-MS/MS分析第25-26页
  2.3 初步构建贝类酸性多糖数据库第26-27页
第三章 结果与讨论第27-53页
  3.1 贝类多糖提取条件的优化第27-29页
    3.1.1 最佳酶解时间第27-28页
    3.1.2 最佳醇沉条件第28-29页
  3.2 贝类中硫酸多糖含量的测定第29-32页
  3.3 定性分析8种贝类酸性多糖第32-38页
    3.3.1 HPLC-MS/MS分析第32-34页
    3.3.2 HPLC-MS~n分析第34-38页
  3.4 定量分析21种贝类酸性多糖第38-51页
    3.4.1 定量分析不同种属全贝酸性多糖第38-45页
    3.4.2 定量分析不同产地的短文蛤、泥蚶的酸性多糖第45-46页
    3.4.3 定量分析不同采样时间对青蛤酸性多糖的影响第46-47页
    3.4.4 定量分析砂海螂、西施舌不同组织部位的酸性多糖第47-51页
  3.5 贝类酸性多糖数据库的初步构建第51-53页
第四章 结论第53-54页
参考文献第54-60页
致谢第60-61页
研究成果第61-62页

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